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Synonymes : | Sart Tilman, Lande de Streupas et Bois St-Jacques |
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Communes : | Esneux, Liège |
Cantonnements DNF : | Liège |
Surface : | 413.31 ha |
Coordonnées : | X Lambert : 235836 - Y Lambert : 142387 Voir la localisation avec la cartographie dynamique |
Rappel : toute circulation en dehors de la voie publique requiert l'accord préalable du propriétaire ou de son délégué. |
S'étendant sur plus de 400 hectares, le domaine du Sart-Tilman est situé au sud de Liège, en bordure de l'Ardenne condruzienne, où il occupe un éperon rocheux dominant la vallée de l'Ourthe. En partie propriété de l'Université de Liège depuis les années 1950, il renferme de nombreux milieux de grand intérêt paysager et scientifique comme la lande de Streupas, le vallon du Blanc Gravier, le parc de Colonster, etc. La végétation est très variée en raison des différentes roches qui y affleurent (calcaires tournaisiens, schistes, psammites, ...) et des affectations du sol. On peut donc y rencontrer aussi bien des landes à callunes et à myrtille et des chênaies acidophiles, que des hêtraies calcicoles, des pelouses à métallophytes, des aulnaies rivulaires, des prairies humides, des friches, etc. Bien que certaines espèces semblent avoir disparu au cours des dernières décennies, la richesse biologique du site demeure remarquable.
Ancienne(s) commune(s) | Surface | Nouvelle(s) commune(s) | Province(s) |
---|---|---|---|
Angleur | 346.04 ha | LIEGE | LIEGE |
Esneux | 8.34 ha | ESNEUX (partim ???) | LIEGE |
Ougrée | 37.49 ha | SERAING (partim ???) | LIEGE |
Tilff | 15.97 ha | ESNEUX (partim ???) | LIEGE |
Cantonnement(s) | Surface | Direction(s) |
---|---|---|
Liège | 413.31 ha | Liège |
A compléter
Le château de Colonster et alentours sont classés depuis le 13 novembre 1981 et le 21 avril 1986.
Privé(s) ONG Communes Région Autres publics
Code du site | Nom du site | Surface |
---|---|---|
223 | Sart Tilman | 261,33 ha |
Taxon | Statut de protection | Liste rouge | Statut | Année | Rep* | Protection | Source | |
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Animaux - Vertébrés - Mammifères | ||||||||
Meles meles | Oui | Non | 2008 | L. Schmitz | ||||
Mustela putorius | Non | Non | L. Schmitz | |||||
Animaux - Vertébrés - Oiseaux | ||||||||
Accipiter nisus | Oui | Non | Nicheur | 2008 | L. Schmitz | |||
Anthus trivialis | Oui | Non | Nicheur | 2008 | L. Schmitz | |||
Ardea cinerea | Oui | Non | Nicheur (> 50 couples) | 2008 | L. Schmitz | |||
Columba oenas | Oui | Non | Nicheur | 2008 | L. Schmitz | |||
Dendrocopos minor | Oui | Non | Nicheur | 2008 | L. Schmitz | |||
Dryocopus martius | Oui | Non | Nicheur | 2008 | L. Schmitz | |||
Falco tinnunculus | Oui | Non | Nicheur | 2008 | L. Schmitz | |||
Lullula arborea | Oui | Oui | Nicheur (1-2 couples) | 2008 | L. Schmitz | |||
Pernis apivorus | Oui | Non | Nicheur | 2008 | L. Schmitz | |||
Picus viridis | Oui | Non | Nicheur | 2008 | L. Schmitz | |||
Scolopax rusticola | Non | Non | Abondant | 2008 | L. Schmitz | |||
Tyto alba | Oui | Non | Nicheur | 2008 | L. Schmitz | |||
Animaux - Vertébrés - Amphibiens | ||||||||
Alytes obstetricans | Oui | Non | 2008 | E. Graitson, M. Denoël | ||||
Bombina variegata | Oui | Oui | Disparu | 1988 | Rainne | |||
Bufo bufo | Oui | Non | 2008 | E. Graitson, M. Denoël | ||||
Ichthyosaura alpestris | Oui | Non | 2008 | E. Graitson, M. Denoël | ||||
Lissotriton helveticus | Oui | Non | 2008 | E. Graitson, M. Denoël | ||||
Lissotriton vulgaris | Oui | Non | 2008 | E. Graitson, M. Denoël | ||||
Rana temporaria | Oui | Non | 2008 | E. Graitson, M. Denoël | ||||
Animaux - Vertébrés - Reptiles | ||||||||
Anguis fragilis | Oui | Non | 2008 | E. Graitson | ||||
Coronella austriaca | Oui | Oui | 2007 | M. Denoël | ||||
Natrix natrix | Oui | Oui | > 250 ex. | 2008 | A | E. Graitson | ||
Podarcis muralis | Oui | Non | Versant de l'Ourthe (Famelette) | 2008 | E. Graitson | |||
Zootoca vivipara | Oui | Non | Micro population | 2006 | E. Graitson | |||
Invertébrés - Insectes - Papillons diurnes | ||||||||
Apatura iris | Non | Non | 1998 | GT Lycaena (L. Schmitz) | ||||
Cyaniris semiargus | Non | Non | 2001 | GT Lycaena (L. Schmitz, C. Dopagne) | ||||
Issoria lathonia | Oui | Non | reproduction | 2011 | GT Lycaena | |||
Melanargia galathea | Non | Non | 1997 | GT Lycaena (L. Schmitz) | ||||
Nymphalis polychloros | Non | Non | 2001 | GT Lycaena (C. Dopagne) | ||||
Invertébrés - Insectes - Papillons nocturnes | ||||||||
Coleophora vacciniella | 2011 | J.-Y. Baugnée | ||||||
Euplagia quadripunctaria | 2004 | GT Lycaena (P. Hauteclair) | ||||||
Invertébrés - Insectes - Libellules | ||||||||
Coenagrion pulchellum | Oui | Oui | Basses Prairies | 2015 | L. Schmitz, M. Seleck | |||
Cordulegaster bidentata | Oui | Oui | Reproduction ! | 2006 | GT Gomphus (L. Schmitz) | |||
Cordulegaster boltonii | Non | Non | 1996 | GT Gomphus (L. Schmitz) | ||||
Onychogomphus forcipatus | Non | Non | Ile Rousseau | 2002 | GT Gomphus (V. Louwette) | |||
Sympetrum flaveolum | Non | Non | Basses Prairies | 2000 | GT Gomphus (L. Schmitz) | |||
Invertébrés - Insectes - Coléoptères | ||||||||
Chilocorus bipustulatus | 2011 | GT Coccinula (J.-Y. Baugnée) | ||||||
Coccinella hieroglyphica | 1998 | GT Coccinula (J.-Y. Baugnée) | ||||||
Exochomus nigromaculatus | 2011 | GT Coccinula (J.-Y. Baugnée) | ||||||
Hippodamia tredecimpunctata | Basses Prairies | 2000 | GT Coccinula (J.-Y. Baugnée) | |||||
Labidostomis tridentata | 2021 | A. Cipolla | ||||||
Lucanus cervus | 2022 | Divers obs. | ||||||
Myzia oblongoguttata | 1998 | GT Coccinula (J.-Y. Baugnée) | ||||||
Typhaeus typhoeus | ||||||||
Invertébrés - Insectes - Orthoptères | ||||||||
Chorthippus montanus | 2008 | E. Graitson | ||||||
Chorthippus vagans | 1 ex. (erratique ?) | 2008 | L. Schmitz | |||||
Stethophyma grossum | 2008 | E. Graitson | ||||||
Invertébrés - Insectes - Hyménoptères | ||||||||
Andrena fuscipes | 2015 | A. Pauly | ||||||
Anthophora retusa | 2011 | A. Pauly | ||||||
Colletes cunicularius | 2011 | A. Pauly | ||||||
Colletes succinctus | 2014 | J.-Y. Baugnée, A. Pauly | ||||||
Panurgus banksianus | 2014 | A. Pauly | ||||||
Panurgus calcaratus | 2013 | A. Pauly | ||||||
Plantes - Plantes supérieures | ||||||||
Allium ursinum | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | ||||||
Berberis vulgaris | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | ||||||
Butomus umbellatus | Ourthe | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | |||||
Calamagrostis arundinacea | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | ||||||
Campanula persicifolia | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | ||||||
Carex umbrosa | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | ||||||
Circaea x intermedia | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | ||||||
Cornus mas | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | ||||||
Festuca altissima | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | ||||||
Lonicera xylosteum | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | ||||||
Luzula luzuloides | 2015 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | ||||||
Melica nutans | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | ||||||
Mespilus germanica | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | ||||||
Neottia nidus-avis | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | ||||||
Oreopteris limbosperma | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | ||||||
Phegopteris connectilis | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | ||||||
Phyteuma nigrum | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | ||||||
Rhamnus cathartica | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | ||||||
Thlaspi caerulescens subsp. calaminare | Streupas | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | |||||
Vincetoxicum hirundinaria | 2008 | J. Lambinon, Ph. Destinay, A. Froment, J. Duvigneaud | ||||||
Viola calaminaria | Streupas | 2011 | J. Lambinon et al. |
Mammifères: Apodemus sylvaticus, Capreolus capreolus, Clethrionomys glareolus, Martes foina, Mustela erminea, Mustela nivalis, Mustela putorius, Ondatra zibethicus, Oryctolagus cuniculus, Sciurus vulgaris.
Oiseaux nicheurs (L. Schmitz, 1997-2008): Accipiter nisus, Anthus trivialis, Ardea cinerea, Asio otus, Buteo buteo, Carduelis cannabina, Columba oenas, Dendrocopos major, Dendrocopos minor, Dryocopus martius, Emberiza citrinella (disparu ?), Falco tinnunculus, Lullula arborea, Pernis apivorus, Picus viridis, Scolopax rusticola, Strix aluco, Tyto alba.
Amphibiens (données Aves-Rainne, 1980-2008): Alytes obstetricans, Bombina variegata, Bufo bufo, Ichthyosaura alpestris, Lissotriton helveticus, Lissotriton vulgaris, Rana temporaria, Salamandra salamandra.
Reptiles (données Aves-Rainne, 1980-2008): Anguis fragilis, Coronella austriaca, Natrix natrix, Podarcis muralis, Zootoca vivipara.
Odonates (données GT Gomphus + divers obs. 1996-2015): Aeshna cyanea, Aeshna grandis, Anax imperator, Calopteryx splendens, Calopteryx virgo, Coenagrion puella, Coenagrion pulchellum, Cordulegaster bidentata, Cordulegaster boltonii, Gomphus vulgatissimus, Ischnura elegans, Lestes viridis, Libellula depressa, Orthetrum cancellatum, Platycnemis pennipes, Pyrrhosoma nymphula, Somatochlora metallica, Sympetrum flaveolum, Sympetrum striolatum, Sympetrum vulgatum.
Lépidoptères rhopalocères (données GT Lycaena, 1997-2008): Aglais urticae, Anthocharis cardamines, Apatura iris, Aphantopus hyperantus, Araschnia levana, Coenonympha pamphilus, Gonepteryx rhamni, Inachis io, Issoria lathonia, Lasiommata megera, Leptidea sinapis, Lycaena phlaeas, Maniola jurtina, Melanargia galathea, Neozephyrus quercus, Nymphalis polychloros, Ochlodes sylvanus, Papilio machaon, Pararge aegeria, Pieris brassicae, Pieris napi, Pieris rapae, Polygonia c-album, Polyommatus icarus, Polyommatus semiargus, Thymelicus lineolus, Thymelicus sylvestris, Vanessa atalanta.
Hyménoptères Apoïdes (données A. Pauly 1978-2014): Andrena bicolor, Andrena chrysosceles, Andrena cineraria, Andrena denticulata, Andrena flavipes, Andrena florea, Andrena fulva, Andrena fulvida, Andrena fuscipes, Andrena gelriae, Andrena haemorrhoa, Andrena hattorfiana, Andrena helvola, Andrena labiata, Andrena minutula, Andrena nigroaenea, Andrena nitida, Andrena similis, Andrena subopaca, Andrena vaga, Andrena ventralis, Anthidiellum strigatum, Anthophora retusa, Apis mellifera, Bombus bohemicus, Bombus lapidarius, Bombus lucorum, Bombus pascuorum, Bombus pratorum, Bombus terrestris, Chelostoma rapunculi, Colletes cunicularius, Colletes succinctus, Dufourea dentiventris, Halictus rubicundus, Hylaeus brevicornis, Hylaeus communis, Hylaeus confusus, Hylaeus dilatatus (= annularis), Hylaeus hyalinatus, Lasioglossum albipes, Lasioglossum calceatum, Lasioglossum fulvicorne, Lasioglossum laevigatum, Lasioglossum laticeps, Lasioglossum leucopus, Lasioglossum leucozonium, Lasioglossum minutulum, Lasioglossum morio, Lasioglossum parvulum, Lasioglossum pauxillum, Lasioglossum punctatissimum, Lasioglossum semilucens, Lasioglossum villosulum, Macropis fulvipes, Megachile ericetorum, Megachile lagopoda, Megachile ligniseca, Melitta haemorrhoidalis, Nomada alboguttata, Nomada fabriciana, Nomada femoralis, Nomada flava, Nomada flavoguttata, Nomada fucata, Nomada fuscicornis, Nomada goodeniana, Nomada lathburiana, Nomada panzeri, Nomada rufipes, Nomada zonata, Panurgus banksianus, Panurgus calcaratus, Seladonia tumulorum, Sphecodes albilabris, Sphecodes crassus, Sphecodes ephippius, Sphecodes ferruginatus, Sphecodes geoffrellus, Sphecodes gibbus, Sphecodes monilicornis.
Plantes supérieures (divers obs. 1980-2008): Acer pseudoplatanus, Agrostis capillaris, Allium ursinum, Alnus glutinosa, Anemone nemorosa, Arum maculatum, Asplenium scolopendrium, Athyrium filix-femina, Berberis vulgaris, Betula pendula, Betula pubescens, Bidens cernua, Bidens frondosa, Blechnum spicant, Butomus umbellatus, Calamagrostis arundinacea, Calamagrostis canescens, Calluna vulgaris, Campanula persicifolia, Campanula rotundifolia, Cardamine amara, Carex digitata, Carex pendula, Carex remota, Carex umbrosa, Carpinus betulus, Chrysosplenium oppositifolium, Circaea intermedia, Clematis vitalba, Cornus mas, Deschampsia cespitosa, Deschampsia flexuosa, Dryopteris affinis subsp. borreri, Dryopteris dilatata, Dryopteris filix-mas, Elodea nuttallii, Festuca altissima, Festuca filiformis, Festuca rubra subsp. commutata, Galium palustre, Glyceria fluitans, Hedera helix, Holcus mollis, Ilex aquifolium, Impatiens noli-tangere, Lamium galeobdolon subsp. montanum, Lonicera periclymenum, Lonicera xylosteum, Luzula luzuloides, Luzula sylvatica, Malus sylvestris subsp. sylvestris, Melica nutans, Melica uniflora, Mercurialis perennis, Mespilus germanica, Milium effusum, Molinia caerulea, Neottia nidis-avis, Oreopteris limbosperma, Oxalis acetosella, Phalaris arundinacea, Phegopteris connectilis, Phyteuma nigrum, Picea abies, Pinus sylvestris, Poa chaixii, Poa nemoralis, Primula veris, Prunus padus, Pseudotsuga menziesii, Pteridium aquilinum, Quercus petraea, Quercus robur, Ranunculus fluitans, Ranunculus sceleratus, Rhamnus cathartica, Rubus sylvaticus, Rumex acetosa, Salix aurita, Sambucus racemosa, Scutellaria galericulata, Senecio ovatus, Sorbus aucuparia, Stellaria holostea, Thlaspi caerulescens subsp. calaminare, Trifolium medium, Vaccinium myrtillus, Vincetoxicum hirundinaria, Viola calaminaria, Viola hirta, Viola reichenbachiana,
Plantes supérieures (données publiées J. Duvigneaud 1976): Agrostis canina, Amaranthus albus, Apera interrupta, Arabis hirsuta, Asplenium adiantum-nigrum, Asplenium scolopendrium, Atropa belladonna, Avena fatua, Berberis vulgaris, Berula erecta, Betula x aurata, Bidens frondosa, Blechnum spicant, Bromus ramosus, Buddleja davidii, Calamagrostis arundinacea, Calamagrostis canescens, Callitriche obtusangula, Callitriche platycarpa, Callitriche stagnalis, Campanula persicifolia, Cardamine flexuosa, Cardamine impatiens, Cardaminopsis arenosa subsp. borbasii, Cardaminopsis halleri, Carex caryophyllea, Carex digitata, Carex divulsa subsp. divulsa, Carex muricata subsp. lamprocarpa, Carex spicata, Carex strigosa, Carex umbrosa, Carex vesicaria, Centaurea jacea subsp. grandiflora, Centaurea jacea subsp. jacea, Centaurea jacea subsp. timbalii, Centaurium erythraea, Chenopodium botrys, Chenopodium ficifolium, Chenopodium rubrum, Circaea intermedia, Coronopus didymus, Corydalis solida, Crataegus rhipidophylla, Crepis paludosa, Daphne mezereum, Dianthus armeria, Dicentra formosa, Diplotaxis tenuifolia, Dipsacus pilosus, Draba muralis, Dryopteris affinis subsp. borreri, Dryopteris dilatata, Echinops commutatus, Epilobium ciliatum, Epilobium obscurum, Epilobium palustre, Epilobium roseum, Epilobium tetragonum subsp. lamyi, Epilobium tetragonum subsp. tetragonum, Epilobium x floridulum, Epilobium x floridulum, Epilobium x limosum, Epipactis helleborine, Equisetum fluviatile, Equisetum sylvaticum, Eragrostis minor, Euphorbia esula, Euphorbia lathyris, Euphrasia nemorosa, Fallopia dumetorum, Fallopia sacchalinensis, Festuca altissima, Galeopsis bifida, Galeopsis segetum, Galium odoratum, Galium palustre subsp. elongatum, Geranium lucidum, Glebionis segetum, Glyceria declinata, Gymnocarpium dryopteris, Gymnocarpium robertianum, Heracleum sphondylium var. angustifolium, Hesperis matronalis, Hieracium bauhinii, Hieracium glaucinum, Hieracium lachenalii, Hieracium laevigatum, Hieracium murorum, Hieracium sabaudum, Hieracium umbellatum, Hypericum tetrapterum, Impatiens glandulifera, Impatiens parviflora, Kickxia elatine, Lamium galeobdolon subsp. montanum, Lathyrus latifolius, Lathyrus sylvestris, Lathyrus tuberosus, Lepidium densiflorum, Ligustrum ovalifolium, Ligustrum vulgare, Lonicera xylosteum, Lunaria annua, Lunaria rediviva, Lupinus polyphyllus, Mahonia aquifolium, Malus sylvestris subsp. sylvestris, Medicago falcata, Mentha aquatica, Mentha arvensis subsp. austriaca, Mentha x verticillata, Misopates orontium, Monotropa hypopitys subsp. hypopitys, Myriophyllum spicatum, Myrrhis odorata, Nardus stricta, Neottia nidus-avis, Oenothera glazioviana, Oreopteris limbosperma, Origanum vulgare var. prismaticum, Ornithogalum umbellatum subsp. umbellatum, Persicaria mitis, Phalaris canariensis, Phegopteris connectilis, Philadelphus coronarius, Phyteuma nigrum, Pimpinella major var. bipinnata, Poa chaixii, Poa compressa, Polygala serpyllifolia, Polygonatum verticillatum, Polystichum setiferum, Polystichum setiferum var. hastulatum, Populus alba, Populus nigra var. nigra, Prunus cerasus, Prunus padus, Pulmonaria officinalis, Ribes nigrum, Salix purpurea var. lambertiana, Salix x charrieri, Salix x holosericea, Sambucus nigra var. laciniata, Saxifraga granulata, Securigera varia, Sedum telephium subsp. fabaria, Selinum carvifolia, Senecio erucifolius, Senecio inaequidens, Sesleria caerulea, Silene vulgaris subsp. vulgaris var. humilis, Sisymbrium altissimum, Sisymbrium austriacum subsp. chrysanthum, Sisymbrium orientale, Sorbus torminalis, Spiraea chamaedryfolia subsp. ulmifolia, Spiraea douglasii, Spiraea x billardii, Symphytum x uplandicum, Taraxacum angustisquameum, Taraxacum lawalrei, Taraxacum quadrans, Taxus baccata, Thlaspi caerulescens subsp. calaminare, Tilia cordata, Tilia platyphyllos subsp. cordifolia, Trifolium hybridum subsp. hybridum, Trifolium medium, Trifolium resupinatum var. majus, Typha latifolia, Ulex europaeus, Verbascum densiflorum, Veronica hederifolia subsp. lucorum, Veronica montana, Vicia tetrasperma, Viola calaminaria, Viola hirta, Viola odorata, Viscum album.
Plantes: Amaranthus albus, Castanea sativa, Elodea nuttallii, Fallopia japonica, Picea abies, Pinus sylvestris, Prunus serotina, Pseudotsuga menziesii, Senecio inaequidens.
Animaux: Alopochen aegyptiacus, Branta canadensis, Harmonia axyridis, Ondatra zibethicus.
La réserve naturelle a été créée à des fins scientifiques et pour l'enseignement de l'Ecologie et de la Botanique.
Les seules menaces qui pèsent sur la réserve sont la reforestation des landes et prairies sèches.
A compléter
Objectifs poursuivis par la gestion (voir http://www.liege.be/reserve-naturelle-sart-tilman/contacts.htm):
Il existe très peu d'espaces forestiers libres d'interventions humaines en Région wallonne. L'originalité de la réserve naturelle du Sart Tilman réside dans la protection des grands types forestiers de l'Ardenne condrusienne, ainsi que de ses zones de contact d'une part avec le bassin de Namur et d'autre part avec le Condroz calcaire. Dans sa majeure partie, la faune et la flore sont laissées à leur développement spontané. Cependant, la réserve comprend également la lande de Streupas, où une gestion active vise à la conservation et à la restauration de différents faciès végétaux semi-naturels (lande à bruyère, pelouse, e.a.). La présence d'une flore calaminaire, en forte régression dans notre pays, doit aussi être soulignée.
Il faut enfin remarquer l'intérêt de l'existence d'une réserve naturelle à l'intérieur même d'un campus universitaire et, tout spécialement, l'opportunité de conjuguer protection du site, intérêt didactique de la réserve et espaces privilégiés pour des travaux d'étudiants et de chercheurs.
En fonction de l'intérêt biologique décrit ci-dessus et de la spécificité du domaine du Sart Tilman, espace vert multifonctionnel de par sa proximité de l'agglomération liégeoise, les objectifs de la réserve naturelle sont donc les suivants :
- conservation et suivi de l'évolution spontanée des zones forestières représentatives de l'Ardenne condrusienne ;
- conservation et restauration des landes à bruyère et pelouses calaminaires de Streupas ;
- reconstitution de futaies feuillues dans certaines parcelles actuellement occupées par des plantations d'espèces exotiques ou des taillis de charme ;
- développement d'études et de recherches scientifiques ;
- exploitation des valeurs didactiques du site.
a) La lande de Streupas
Un premier volet de mesure doit permettre de rétablir puis de maintenir les limites des espaces de landes :
- abattage des pionniers (bouleaux, saules,…) et débroussaillage de recrus ligneux, des genêts,…
- dans la zone forestière périphérique, élimination des espèces susceptibles de se disséminer dans la lande (bouleaux, trembles, saules marsaults, surtout).
La gestion des landes proprement dite fait appel à des mesures adéquates d'entretien :
- l'étrépage, appliqué sur des surfaces limitées et peu pentues est la méthode la plus drastique de régénération des landes à bruyère âgées ou fortement envahies par d'autres espèces ; la rotation de cette opération sera exécutée de manière, notamment, à maintenir des zones comprenant des espaces de sols dégagés nécessaires à la nidification de l'alouette lulu ;
- le fauchage en fin d'été, si possible avec enlèvement des résidus, doit être appliqué périodiquement ;
- des expériences de brûlage printanier contrôlé peuvent être appliquées localement ;
- le pâturage ne peut être expérimenté, ponctuellement, que si une solution de compatibilité avec l'importante fréquentation du site peut être trouvée.
- le fauchage régulier des coupe-feu est indispensable à la protection du site contre l'incendie ; sur le plan paysager, il sera nécessaire de modifier le tracé des coupe-feu existants en l'adaptant au relief ;
- le suivi des carrés permanents et des relevés phytosociologiques sont prévus.
b) Les zones forestières.
Elles sont considérées comme réserve naturelle intégrale. Le suivi de l'évolution spontanée de la végétation est assuré par le relevé de plusieurs carrés permanents.
Trois exceptions existent à ce principe directeur :
- les abords des infrastructures de circulation existantes qui sont entretenus, pour des raisons de sécurité (à certains endroits, des coupes ne seront pas sans intérêt biologique dans la mesure où elles font apparaître une flore et une faune thermophile et héliophile).
- dans les parcelles plantées d'espèces exotiques, sont pratiquées des éclaircies, abattages ou exploitations qui permettent la régénération progressive d'une forêt feuillue.
- dans certaines situations particulières comme les taillis de charme, floristiquement pauvres mais stables et ayant une origine anthropique, on envisage des interventions forestières destinées à la reconstitution de forêts feuillues plus naturelles.
c) L'exploitation didactique de la réserve.
Les travaux concernent principalement l'entretien du balisage des sentiers didactique existants ou à créer. Il est également prévu d'afficher un extrait du règlement de la réserve à ses accès.
Les principes de l'accès au public sont les suivants (voir http://www.liege.be/reserve-naturelle-sart-tilman/contacts.htm):
* l'accès des piétons à la réserve est interdit en dehors des chemins existants ;
* l'accès des cavaliers n'est autorisé que sur les pistes cavalières existantes et balisées définies en accord avec le cercle équestre l'Eperon ;
* l'accès aux skieurs de fond est limité aux pistes de ski balisées ;
* l'accès aux autres utilisateurs (cyclistes,…) n'est autorisé que moyennant accord préalable de l'Université, qui précisera les zones à éviter ;
* l'accès de groupes organisés est toujours soumis à autorisation de l'Université ;
* la circulation dans la réserve est interdite entre le coucher et le lever du soleil ; pour des motifs de sécurité publique, de protection des espèces, de travaux de gestion, l'Université peut interdire temporairement l'accès à certains chemins ou certaines zones ;
* l'accès à l'ensemble de la réserve est libre en tout temps pour les activités scientifiques et didactiques de l'Université et d'associations agréées par cette dernière.
Le site du Sart Tilman se trouve en Ardenne condrusienne, sur le promontoire situé entre les vallées de l'Ourthe et de la Meuse. Il se trouve sur le passage de la faille eifelienne ou charriage du Condroz. Cet accident géologique 'superpose le synclinorium de Dinant déplacé du sud vers le nord au cours de l'orogenèse hercynienne, au synclinorium de Namur dont le bassin houiller occupe la partie axiale. Lors du transport, d'énormes masses de roches ont été détachées, entraînées, et se trouvent coincées entre les deux synclinoria au sein d'un écheveau compliqué de failles. Il s'agit notamment des lambeaux de poussée de Streupas et de Kinkempois avec les gisements métallifères d'Angleur exploités jadis pour blende, galène et pyrite' (CALEMBERT et al., 1974).
La faille de Streupas est occupée par des gisements importants de minerais (sulfures de zinc, de plomb, de fer, etc) qui furent exploités par les usines de la Vieille Montagne.
C'est ainsi que l'on rencontre des schistes et des grès de l'Emsien, des calcaires du Couvinien, du Givétien, du frasnien, des grès du Famennien et enfin des calcaires du Tournaisien. Sur le plateau (hors réserve) existent d'importants dépôts de sables et de graviers tertiaires (sables de Boncelles) et de limons quaternaires.
La réserve se trouve dans la partie orientale du domaine du Sart Tilman vers l'Ourthe. A cet endroit, le plateau est profondément entaillé par cette rivière et ses petits affluents de la rive gauche qui forment des vallons très encaissés (un cône de déjection important existe au confluent du ruisseau du Blanc Gravier). En plus de la plaine alluviale de l'Ourthe (dans laquelle se trouve l'île Rousseau), en général très étroite, on rencontre donc des vallons aux versants plus ou moins abrupts d'orientation variée. D'anciennes terrasses de l'Ourthe subsistent en divers endroits.
Le domaine universitaire du Sart Tilman, incluant la lande de Streupas, a fait l'objet de nombreuses publications notamment botaniques (DUVIGNEAUD et TERCARFS, 1975; DUVIGNEAUD, 1976; DUVIGNEAUD, 1978; DESTINAY et LAMBINON, 2005; etc.).
A. Sur les plateaux, on trouve:
- des chênaies-hêtraies silicicoles avec taillis de Sorbus aucuparia, Malus sylvestris subsp. sylvestris, Sambucus racemosa, Mespilus germanica, Ilex aquifolium,... avec, au sol, Vaccinium myrtillus, Deschampsia flexuosa, Holcus mollis, Lonicera periclymenum, Pteridium aquilinum et, dans les milieux un peu plus riches et plus humides, Milium effusum, Poa chaixii, Senecio ovatus, Luzula luzuloides, Deschampsia cespitosa. En lisière ou dans les coupes se développe Calamagrostis arundinacea (Fago-Quercetum);
- des chênaies sessiliflores à Molinia caerulea.
B. Sur les pentes des vallons encaissés, se rencontrent des groupements végétaux variés comme:
- des chênaies-charmaies des sols calcaires (Carici-Carpinetum);
- des chênaies-charmaies sur schistes;
- des chênaies silicicoles à Poa nemoralis;
- des chênaies-charmaies à Allium ursinum, sur colluvions de bas de pente;
- des chênaies silicicoles à Luzula sylvatica et diverses fougères: Oreopteris limbosperma, Athyrium filix-femina, Phegopteris connectilis, Blechnum spicant, ...
- des chênaies à Festuca altissima, ...
C. Les fonds de vallons sont occupés par:
- des aulnaies à Carex pendula, C. remota, Galium palustre, Glyceria fluitans, Cardamine amara, Scutellaria galericulata, ...
- des frênaies-aulnaies à Prunus padus, Carex pendula, Chrysosplenium oppositifolium, Impatiens noli-tangere, Circaea intermedia,... (Stellario-Alnetum);
D. La lande de Streupas occupe un promontoire couvert par:
- une pelouse calaminaire rase, localement assez ouverte, formée par quelques métallophytes (Viola calaminaria, Thlaspi caerulescens subsp. calaminare ) et pseudométallophytes (Agrostis tenuis, Festuca nigrescens, Campanula rotundifolia, Rumex acetosa, etc. (Violon calaminariae);
- une chênaie silicicole, sur les assises du Famennien;
- une hêtraie calcicole sur les calcaires dolomitiques du Tournaisien (Cephalanthero-Fagion), avec Neottia nidis-avis, Carex digitata, Lonicera xylosteum, Dianthus armeria, Carex muricata subsp. lamprocarpa, ... ;
- des taillis xéro-theromphiles très riches en espèces parmi lesquelles Cornus mas, Lonicera xylosteum, Rhamnus cathartica, Berberis vulgaris, et de nombreuses plantes herbacées calcicoles, de coupes forestières, de lisière forestière, etc. (Berberidion);
- des landes herbeuses et prairies sèches à Calluna vulgaris, Vaccinium myrtillus, Molinia caerulea qui résultent de la fréquence des incendies en relation avec une pollution en poussières de Zn et en SO2;
- une chênaie-charmaie calcicole à Primula veris, Viola hirta, Carex digitata, Campanula persicifolia, Melica nutans,...(Carici-Carpinetum) environnée d'espèces de lisière (Trifolium medium, Vincetoxicum hirundinaria,...) (Trifolion medii).
E. L'Ile Rousseau, située dans le lit de l'Ourthe:
L'eau libre et les anses calmes accueillent Ranunculus fluitans, Elodea nuttallii (Ranunculion fluitantis); sur les vases exondées, diverses espèces du Bidention apparaissent (Bidens cernua, B. frondosa, Ranunculus sceleratus,...) et sur les berge le rare Butomus umbellatus.
Diverses espèces végétales plus courantes en Ardenne sont présentes au Sart-Timan où elles atteignent parfois la limite nord de leur aire de distribution régionale, notamment Luzula luzuloides, Festuca altissima, Circaea intermedia, Calamagrostis canescens et Poa chaixii. C'est le cas également d'éléments calcicoles comme Campanula persicifolia, Vincetoxicum hirundinaria, Melica nutans, Cornus mas, Carex digitata, ...
Fin des années 1960, Cl. Magnée y a signalé plusieurs espèces de sphaignes: Sphagnum fimbriatum, Sphagnum inundatum, Sphagnum palustre, Sphagnum subnitens, Sphagnum teres.
La faune du Sart Tilman a fait l'objet de plusieurs inventaires: les vertébrés de 1975 à 1981, les insectes en 1978 et 1979, les mollusques en 1977 et 1978. Des données plus récentes ont été récoltées pour les mammifères, les oiseaux et les mollusques et certains ordres ou familles d'insectes (1989 à 2015) (voir http://www.liege.be/reserve-naturelle-sart-tilman/intro0b2c.htm).
Parmi les 23 espèces de mammifères recensées, on notera la présence du putois (Putorius putorius) et la réapparition récente du blaireau (Meles meles) et du sanglier (Sus scrofa).
On y recense quelques 60 espèces d'oiseaux nicheuses. Depuis l'instauration de mesure de gestion telles l'étrépage et de débroussaillage, l'avifaune de la lande de Streupas comprend un petit noyau d'espèces typiques des landes à bruyères. L'alouette lulu (Lullula arborea) en est l'élément le plus remarquable; elle est accompagnée du pipit des arbres (Anthus trivialis); le bruant jaune (Emberiza citrinella) et la linotte mélodieuse (Carduelis cannabina) ont disparu récemment comme nicheurs locaux, parallèlement à leur déclin général. La bondrée apivore (Pernis apivorus), le pic vert (Picus viridis), le faucon crécerelle (Falco tinnunculus), e.a., profitent de la conjonction de cette lande et des zones forestières.
L'avifaune des forêts, surtout d'anciens taillis, denses, à futaie rare et/ou dispersée, est dominée par des espèces peu exigeantes; on y relève néanmoins l'abondance relative de la bécasse des bois (Scolopax rusticola).
La reconstitution spontanée du couvert forestier, le vieillissement de ces forêts ou la réalisation de plantations ont contribué à la disparition de plusieurs nicheurs remarquables comme la gélinotte des bois (Bonasa bonasia), l'engoulevent d'Europe (Caprimulgus europaeus), le tarier pâtre (Saxicola torquata), la pie-grièche écorcheur (Lanius collurio).
L'avifaune du parc de Colonster profite de très vieilles futaies mélangées et de la proximité de la vallée de l'Ourthe ou de prairies. Les nicheurs marquants en sont l'épervier d'Europe (Accipiter nisus), l'effraie des clochers (Tyto alba), le pigeon colombin (Columba oenas), le pic noir (Dryocopus martius), le pic vert (Picus viridis), le pic épeichette (Dendrocopos minor) et, depuis 1993, le héron cendré (Ardea cinerea) dont la colonie abrite plus de cinquante couples.
Les reptiles sont représentés par 5 espèces: le lézard des murailles (Podarcis muralis), dans la vallée de l'Ourthe à Tilff (La Famelette), le long de la voie ferrée; le lézard vivipare (Zootoca vivipara) cantonné à de petites clairières en forêt, mais peut être disparu actuellement ; l'orvet (Anguis fragilis), bien présent; la couleuvre coronelle (Coronella austriaca) présente au bois d'Oblustène, à proximité immédiate de la réserve; la couleuvre à collier (Natrix natrix), le reptile le plus répandu dans la réserve, jusqu'à proximité des bâtiments universitaires (voir à ce sujet l'étude par capture-marquage-recapture menée par GRAITSON et FUNTOWICZ, 2008).
Pas moins de 6 espèces de batraciens ont été signalées lors des inventaires successifs, parmi lesquelles figure l'emblématique sonneur à ventre jaune (Bombina variegata) dont la présence récente n'a cependant pas été confirmée. Le crapaud accoucheur (Alytes obstetricans) a peut-être lui aussi déserté le site. La présence de la Salamandre terrestre (Salamandra salamandra) est par contre toujours notée dans les ruisseaux de versant.
Illustrant la grande variété de milieux et de conditions écologiques, l'entomofaune se révèle d'une richesse remarquable, incluant nombre d'espèces de grande valeur biogéographique et patrimoniale. En effet, la réserve naturelle du domaine universitaire se situe entièrement dans l'extrémité la plus orientale de la pointe nord-est de l'Ardenne condrusienne. Ainsi, elle héberge bon nombre de Coléoptères d'origine pontique ou méridionale, dont la limite nord de répartition biogéographique coïncide précisément avec le sillon de la Meuse, comme par exemple les Elatérides Limonius aeneoniger, Zorochrus dermestoides, Hypnoidus riparius (ces deux dernières étant des espèces rivulaires). La forêt caducifoliée de chênes et de hêtres héberge de nombreuses espèces sylvicoles caractéristiques, comme le lucane cerf-volant (Lucanus cervus), l'Elatéride Ctenicera pectinicornis et des dizaines d'espèces de longicornes (Cerambycidae) et d'autres coléoptères. La lande de Streupas, milieu très particulier, à la fois thermophile et couvert d'une végétation héliophile et acidophile, est habité par des spécialistes comme la coccinelle noire (Exochomus nigromaculatus), la coccinelle à hiéroglyphes (Coccinella hieroglyphica), la galéruque de la bruyère (Lochmaea suturalis), etc. On notera également l'observation récente de Labidostomis tridentata, une chrysomèle rare et en fort déclin en Région wallonne (voir FAGOT & BORTELS, 2022).
Les terrains sablonneux ou sablo-argileux (affleurements des sables tertiaires, talus sablo-argileux des sentiers, landes) hébergent des espèces psammophiles (sabulicoles) tels plusieurs Hyménoptères Pompilides chasseurs d'araignées (Anoplius viaticus par exemple ou Priocnemis chiodtei, très localisés en Haute Belgique et en région bruxelloise), des Coléoptères Géotrupides ou Scarabéides coprophages typiques des sols sablonneux et peu fréquents en Belgique, comme le minotaure typhée (Typhaeus typhoeus), ou des Elatérides comme Anostirus castaneus, relativement rare ailleurs.
La faune des abeilles sauvages de la lande de Streupas est riche d'au moins 82 espèces capturées entre 1978 et 2015 (PAULY, 2018). Parmi ces espèces figurent plusieurs éléments de grand intérêt patrimonial et pas moins de 7 sont visées par une protection stricte en Région wallonne (annexe 2b - décret du 6 décembre 2001): Andrena fuscipes, Anthidium punctatum, Anthophora retusa, Colletes cunicularius, Macropis fulvipes, Panurgus banksianus et Panurgus calcaratus. Les espèces de Mégachilidae sont très peu représentées, comparé à des inventaires réalisés sur pelouse calcaire par ex. Les Andrenidae et les Halictidae sont en revanche nombreux, accompagnés par une belle diversité d'espèces cleptoparasites du genre Nomada. Certaines abeilles ont été notées récemment et n'étaient pas connues auparavant comme Colletes cunicularius, Colletes succinctus, Andrena vaga, Sphecodes albilabris (coucou chez C. cunicularius), Lasioglossum pauxillum. D'autres n'ont pas été retrouvées récemment. Ainsi, PAULY (2018) souligne l'absence de Dufourea dentiventris dans les relevés des années 2000. Cette espèce pourrait avoir disparu de Streupas, comme on a pu le constater de manière plus générale en Belgique. De même, Lasioglossum fulvicorne et Andrena helvola, abondamment collectées dans les années 1970, sont restées introuvables. A Streupas, les espèces oligolectiques liées à la flore de la lande sont celles spécialisées sur les campanules (Dufourea dentiventris, Melitta haemorrhoidalis, Chelostoma rapunculi), la callune (Andrena fuscipes et Colletes succinctus) et les Asteraceae liguliflores jaunes (Panurgus calcaratus, P. banksianus, Lasioglossum spp.). La flore du printemps par contre est butinée par des abeilles généralistes, en particulier par différentes espèces d'andrènes, d'halictes, de bourdons. Celles-ci peuvent être observées au mois de mai visitant les fleurs des myrtilles (Vaccinium myrtillus) et des genêts (Cytisus scoparius). Les saules sont recherchés par les andrènes les plus hâtives, dont Andrena vaga, qui semble apparue récemment sur le site (espèce en expansion générale en Belgique). Les deux métallophytes du site, le tabouret calaminaire (Thlaspi caerulescens subsp. calaminare) et la violette calaminaire (Viola calaminaria), bien que nectarifères et fleurissant abondamment, ne paraissent guère attractives pour les abeilles sauvages. Les quelques visiteurs occasionnels étaient Nomada fabriciana (sur tabouret) et Anthophora retusa (sur violette).
Les orthoptères sont variés et on trouve au moins trois espèces remarquables sur l'ensemble du massif du Sart-Tilman: Chorthippus montanus et Stethophyma grossum sont confinés aux prairies humides et se retrouvent à Colonster, aux sources du ruisseau du Trou du Chien, tandis que Chorthippus vagans est une espèce xéro-thermophile qui a été observée sur la lande de Streupas (1 ex. probablement erratique - L. Schmitz).
Les biotopes aquatiques lotiques (les deux ruisseaux de la Sordeye et du Blanc Gravier) hébergent la plupart des espèces aquatiques caractéristiques des rivières à cours rapide de Haute Belgique, en raison de la présence d'une série de biotopes variés, à fonds caillouteux, rocheux, graveleux, sableux ou vaseux, en milieu prairial ou boisé. Des études faunistiques réalisées dans le cadre de mémoires de licence, ont confirmé la présence d'une centaine d'invertébrés aquatiques parmi lesquels plusieurs espèces d'Ephéméroptères (genres Nemoura, Ecdyonurus, Rhitrogena, Baetis), de Trichoptères (genres Hydropsyche, Rhyacophila, Synagapetus, Plectronemia, Stenophylax, Mesophylax, Drusus, Sericostoma), de Coléoptères Dysticidae et Helodidae, et une faune de Diptères aquatiques bien diversifiée (14 familles ou sous-familles représentées). Soulignons la présence d'une espèce caractéristique des torrents et cascades, remarquable par ses adaptations morphologiques extrêmement poussées: Liponeura decipiens.
Une étude récente sur la qualité biologique des ruisseaux du domaine du Sart Tilman a été réalisée par DETHIER et al. (2008). Comparé aux années 1960, cette étude a souligné une dégradation légère mais sensible de la faune aquatique et un appauvrisement progressif des communautés aujourd'hui composées d'éléments relativement banals.
La zone humide des Basses Prairies, en contrebas de Colonster héberge une odonatofaune particulièrement riche, incluant Coenagrion pulchellum, espèce exceptionnelle dans la région liégeoise connue sur le site jusqu'à la fin des années 1990 mais revue récemment, en juin 2015. Les petits ruisselets forestiers sont l'habitat d'une libellule élusive et très spécialisée, Cordulegaster bidentata.
Petits étangs dans les vallons.
Château de Colonster : noyau primitif remontant probablement au XIVe siècle profondément transformé du XVIe siècle au XVIIIe siècle (jardins en terrasses, parc, etc).
Sous l'Ancien Régime, le Sart-Tilman était propriété privée et en partie propriété ecclésiastique. La carte de Ferraris (fin du 18ème siècle) indiquait des bois de haute tige sur tout le versant de l'Ourthe.
Après la Révolution française, les bois furent très dégradés (pillage des bois, enlèvement du terreau, pâturage, incendies, etc.). Cette situation ne fit que s'aggraver jusqu'au milieu du XXe siècle.
En 1959, 176 ha furent acquis par l'Université de liège autour du ruisseau du Blanc Gravier. Cette surface fut par la suite considérablement augmentée jusqu'à atteindre 760 ha (en plus des 80 ha acquis par la Province de Liège et confié à l'ULg en vue d'obtenir une gestion cohérente de l'ensemble).
En 1979, par différentes acquisitions, les pouvoirs publics se rendent propriétaires de 1000 ha, incluant le Bois de Nomont, autorisant ainsi la protection de l'intégrité naturelle du massif du Sart-Tilman.
D'autres données historiques relatives au domaine du Sart-Tilman figurent dans le travail de JEUNIAUX (2000).
RESNAT
OFFH
Luc SCHMITZ (Université de Liège, Domaine du Sart-Tilman, 4000 Liège).
Eric GRAITSON (aCREA - Université de Liège, B22, Sart Tilman, B-4000 Liège).